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人腸三葉因子(ITF)ELISA試劑盒說明書

發布時間:2015-01-05瀏覽:1319次

人腸三葉因子(ITF)ELISA試劑盒說明書

本試劑盒僅供研究使用

檢測范圍:15.6 ng/g -1000 ng/g

zui低檢測限:3.9 ng/g

特異性:本試劑盒可同時檢測天然或重組的人ITF,且與其他相關蛋白無交叉反應。

有效期:6個月

預期應用:ELISA法定量測定人血清、血漿、細胞培養上清或其它相關生物液體中ITF含量。

說明

1.試劑盒保存:-20(較長時間不用時);2-8℃(頻繁使用時)。

2.濃洗滌液低溫保存會有鹽析出,稀釋時可在水浴中加溫助溶。

3.中、英文說明書可能會有不一致之處,請以英文說明書為準。

4.剛開啟的酶聯板孔中可能會含有少許水樣物質,此為正常現象,不會對實驗結果造成任何影響。

實驗原理

用純化的抗體包被微孔板,制成固相載體,往包被抗ITF抗體的微孔中依次加入標本或標準品、生物素化的抗ITF抗體、HRP標記的親和素,經過*洗滌后用底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉化成藍色,并在酸的作用下轉化成zui終的黃色。顏色的深淺和樣品中的ITF呈正相關。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度(OD值),計算樣品濃度。

試劑盒組成及試劑配制

  1. 酶聯板(Assay plate ):一塊(96孔)。
  2. 標準品(Standard):2(凍干品)。
  3. 樣品稀釋液(Sample Diluent)1×20ml/瓶。
  4. 生物素標記抗體稀釋液(Biotin-antibody Diluent):1×10ml/瓶。
  5. 辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液 HRP-avidin Diluent):1×10ml/瓶。
  6. 生物素標記抗體(Biotin-antibody):1×120μl/瓶(1100
  7. 辣根過氧化物酶標記親和素(HRP-avidin):1×120μl/瓶(1100
  8. 底物溶液(TMB Substrate):1×10ml/瓶。
  9. 濃洗滌液(Wash Buffer):1×20ml/瓶,使用時每瓶用蒸餾水稀釋25倍。
  10. 終止液(Stop Solution):1×10ml/瓶(2N H2SO4)。


需要而未提供的試劑和器材

  1. 標準規格酶標儀
  2. 高速離心機
  3. 電熱恒溫培養箱
  4. 干凈的試管和Eppendof
  5. 系列可調節移液器及吸頭,一次檢測樣品較多時,用多通道移液器

6.    蒸餾水,容量瓶等

標本的采集及保存

  1. 血清:全血標本請于室溫放置2小時或4℃置夜后于1000 x g離心20分鐘,取上清即可檢測,或將標本放于-20-80保存,但應避免反復凍融。
  2. 血漿:可用EDTA或肝素作為抗凝劑,標本采集后30分鐘內于2 - 8° C 1000 x g離心15分鐘,或將標本放于-20-80保存,但應避免反復凍融。
  3. 細胞培養物上清或其它生物標本:1000 x g離心20分鐘,取上清即可檢測,或將標本放于-20-80保存,但應避免反復凍融。

注:標本溶血會影響zui后檢測結果,因此溶血標本不宜進行此項檢測。

標本的稀釋原則:

首先通過文獻檢索的方式了解待測樣本的大致含量,確定適當的稀釋倍數。只有稀釋至標準曲線的范圍內,檢測的結果才是準確的。稀釋的過程中,應做好詳細的記錄。zui后計算濃度時,稀釋了“N"倍,標本的濃度應再乘以“N"

標準品的稀釋原則:2瓶,每瓶臨用前以樣品稀釋液稀釋至1ml,蓋好后靜置10分鐘以上,然后反復顛倒/搓動以助溶解,其濃度為1000 ng/g,做系列倍比稀釋后,分別稀釋1000 ng/g,500 ng/g250 ng/g125 ng/g,62.5 ng/g,31.2 ng/g15.6 ng/g,樣品稀釋液直接作為標準濃度0 ng/g,臨用前15分鐘內配制。

如配制500 ng/g標準品:取0.5ml(不要少于0.5ml1000 ng/g的上述標準品加入含0.5ml樣品稀釋液的Eppendorf管中,混勻即可,其余濃度以此類推。

生物素標記抗體的稀釋原則:

臨用前以生物素標記抗體稀釋液稀釋,稀釋前根據預先計算好的每次實驗所需的總量配制(每孔100μl),實際配制時應多配制0.1-0.2ml。如10μl生物素標記抗體加990μl生物素標記抗體稀釋液的比例配制,輕輕混勻,在使用前一小時內配制。

辣根過氧化物酶標記親和素的稀釋原則:

臨用前以辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液稀釋,稀釋前根據預先計算好的每次實驗所需的總量配制(每孔100μl),實際配制時應多配制0.1-0.2ml。如10μl辣根過氧化物酶標記親和素加990μl辣根過氧化物酶標記親和素稀釋液 的比例配制,輕輕混勻,在使用前一小時內配制。

操作步驟

實驗開始前,請提前配置好所有試劑,試劑或樣品稀釋時,均需混勻,混勻時盡量避免起泡。每次檢測都應該做標準曲線。如樣品濃度過高時,用樣品稀釋液進行稀釋,以使樣品符合試劑盒的檢測范圍。

  1. 加樣:分別設空白孔、標準孔、待測樣品孔??瞻卓?/span>加樣品稀釋液100μl余孔分別加標準品或待測樣品100μl,注意不要有氣泡,加樣將樣品加于酶標板孔底部,盡量不觸及孔壁,輕輕晃動混勻,酶標板加上蓋或覆膜,37℃反應120分鐘。

為保證實驗結果有效性,每次實驗請使用新的標準品溶液。

  1. 棄去液體,甩干,不用洗滌。每孔加生物素標記抗體工作液 100μl(取1μl生物素標記抗體加99μl生物素標記抗體稀釋液的比例配制,輕輕混勻,在使用前一小時內配制),37℃,60分鐘。
  2. 溫育60分鐘后,棄去孔內液體,甩干,洗板3次,每次浸泡1-2分鐘,350μl/每孔,甩干。
  3. 每孔加辣根過氧化物酶標記親和素工作液(同生物素標記抗體工作液) 100μl,37℃,60分鐘。
  4. 溫育60分鐘后,棄去孔內液體,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分鐘,350μl/每孔,甩干。
  5. 依序每孔加底物溶液90μl,37℃避光顯色(30分鐘內,此時肉眼可見標準品的前3-4孔有明顯的梯度藍色,后3-4孔梯度不明顯,即可終止)。
  6. 依序每孔加終止溶液50μl,終止反應(此時藍色立轉黃色)。終止液的加入順序應盡量與底物液的加入順序相同。為了保證實驗結果的準確性,底物反應時間到后應盡快加入終止液。
  7. 用酶聯儀在450nm波長依序測量各孔的光密度(OD值)。 在加終止液后15分鐘以內進行檢測。

注:

1. 用戶在初次使用試劑盒時,應將各種試劑管離心數分鐘,以便試劑集中到管底。

2. 每次實驗留一孔作為空白調零孔,該孔不加任何試劑,只是zui后加底物溶液及2N H2SO4。測量時先用此孔調OD值至零。

3. 為防止樣品蒸發,試驗時將反應板放于鋪有濕布的密閉盒內,酶標板加上蓋或覆膜。

4. 未使用完的酶標板或者試劑,請于2-8℃保存。標準品、生物素標記抗體工作液、辣根過氧化物酶標記親和素工作液請依據所需的量配置使用。請勿重復使用已稀釋過的標準品、生物素標記抗體工作液或、辣根過氧化物酶標記親和素工作液。

5. 建議檢測樣品時均設雙孔測定,以保證檢測結果的準確性。

洗板方法
手工洗板方法:吸去(不可觸及板壁)或甩掉酶標板內的液體;在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙,酶標板朝下用力拍幾次;將推薦的洗滌緩沖液至少0.3ml注入孔內,浸泡1-2分鐘。根據需要,重復此過程數次。
自動洗板:如果有自動洗板機,應在熟練使用后再用到正式實驗過程中。

計算

以標準物的濃度為橫坐標(對數坐標),OD值為縱坐標(普通坐標),在半對數坐標紙上繪出標準曲線,根據樣品的OD值由標準曲線查出相應的濃度;再乘以稀釋倍數;或用標準物的濃度與OD值計算出標準曲線的直線回歸方程式,將樣品的OD值代入方程式,計算出樣品濃度,再乘以稀釋倍數,即為樣品的實際濃度。

注意事項

1. 當混合蛋白溶液時應盡量輕緩,避免起泡。

2. 洗滌過程非常重要,不充分的洗滌易造成假陽性。

3. 一次加樣時間控制在5分鐘內,如標本數量多,推薦使用排槍加樣。

4. 請每次測定的同時做標準曲線,做復孔。

5. 如標本中待測物質含量過高,請先稀釋后再測定,計算時請zui后乘以稀釋倍數。

6. 在配制標準品、檢測溶液工作液時,請以相應的稀釋液配制,不能混淆。

7. 底物請避光保存。

8. 不要用其它生產廠家的試劑替換試劑盒中的試劑。

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